Μαιευτική Γυναικολογική Μέριμνα
Εισαγωγή amp
Τα μυκοπλάσματα είναι οι μικρότεροι ελεύθεροι μικροοργανισμοί . Στην ουρογεννητική οδό, τα σχετικά είδη είναι M. genitalium, Ureaplasma urealyticum, U. parvum και Μ. Hominis. Το γεννητικό μυκόπλασμα απομονώθηκε για πρώτη φορά το 1980. Η μόλυνση από το Mycoplasma genitalium συνδέεται αναμφισβήτητα με την μή γονοκοκκική/χλαμυδιακή ουρηθρίτιδα των ανδρών . Ο επιπολασμός του Mycoplasma genitalium σε άνδρες με μή γονοκοκκική/χλαμυδιακή ουρηθρίτιδα κυμαίνεται από 10% έως 35% [3] , συμβάλλοντας έτσι σημαντικά στο συνολικό βάρος της ασθένειας . Σε σύγκριση, το Mycoplasma genitalium ανιχνεύεται σε ποσοστό μόνο 1% έως 3,3% των ανδρών και των γυναικών στο γενικό πληθυσμό [4-7 ] . Στις γυναίκες, αρκετές μελέτες έχουν αποδείξει την συσχέτιση μεταξύ του Mycoplasma genitalium και της ουρηθρίτιδας, της τραχηλίτιδας , της ενδομητρίτιδας και της φλεγμονώδους νόσου της πυέλου [8-12 ]. Σε μια πρόσφατη μετα-ανάλυση, Βρέθηκαν σημαντικές συσχετίσεις μεταξύ του Mycoplasma genitalium και της και πυελικής φλεγμονώδους νόσου [13 ] . Το Mycoplasma genitalium έχει συσχετιστεί με πρόωρο τοκετό και αυτόματη αποβολή , αλλά ο επιπολασμός του Mycoplasma genitalium σε έγκυες γυναίκες στην Ευρώπη είναι χαμηλή, και επομένως, η σχετική σημασία του M. genitalium είναι πιθανώς μικρή [14,15] . Οι μελέτες έχουν επίσης δείξει μια σχέση με αυξημένο κίνδυνο υπογονιμότητας σαλπιγγικού παράγοντα (συγκεντρωμένη ή 2.43) . Η ανθεκτικότητα του Mycoplasma genitalium μετά από τη θεραπεία σχετίζεται με υποτροπιάζουσα ή επίμονη μή γονοκοκκική/χλαμυδιακή ουρηθρίτιδα και μέχρι 40% των ασθενών με αυτή την κατάσταση είναι Μ. genitalium θετικοί [16] . Σε μια πρόσφατη μετα-ανάλυση, το Mycoplasma genitalium ήταν ο παράγων που σχετίζεται με μεγάλη πιθανότητα για επίμονη ουρηθρίτιδα [26] . Έτσι, η μη εξάλειψη του Mycoplasma genitalium οδηγεί σε επίμονη ή επαναλαμβανόμενη ασθένεια στη μεγάλη πλειοψηφία των ανδρών με επίμονη μόλυνση και η διάγνωση και η βέλτιστη θεραπεία είναι εξαιρετικά σημαντική . Το Mycoplasma genitalium έχει αποδειχθεί ότι διευκολύνει την μετάδοση του ιού HIV ιδίως σε μελέτες από την υποσαχάρια Αφρική [18-20] . Εάν η εκρίζωση αποτύχει λόγω ακατάλληλης θεραπείας , αυτό μπορεί να έχει ιδιαίτερα σημαντικές επιπτώσεις στον αυξημένο κίνδυνο μετάδοσης του HIV .
Ένα σημαντικό στοιχείο της ορολογίας που πρέπει να κατανοήσουμε είναι η έννοια της ουρηθρίτιδας . Η ουρηθρίτιδα είναι η εμφανής φλεγμονή της ουρήθρας , είτε ανδρικής είτε γυναικείας . Ιδιαίτερα στους άνδρες , η ουρηθρίτιδα έχει απο αρχαιοτάτων χρόνων συνδεθεί με την βλεννόρροια , δηλαδή την έκκριση βλέννης από την ανδρική ουρήθρα , ένα κλασσικό αφροδίσιο νόσημα . Το νόσημα αυτό προκαλείται από τον γονόκοκκο , την Neisseria Gonorrheae . Επειδή παγκοσμίως , ο γονόκοκκος είναι συχνός , οι περιπτώσεις ουρηθρίτιδας οφείλονται κατα μείζονα λόγο σε αυτόν . Υπάρχουν όμως και περιπτώσεις που η ουρηθρίτιδα δεν οφείλεται σε γονόκοκκο ή χλαμύδιο , και αυτή η ουρηθρίτιδα ονομάζεται μή γονοκοκκική μή χλαμυδιακή ουρηθρίτιδα . Σε κάθε περίπτωση ουρηθρίτιδας , πρέπει να γίνεται έλεγχος για γονόκοκκο και χλαμύδιο . Στην σύγχρονη πρακτική , μπορούν να ληφθούν με μία καλλιέργεια , (δηλαδή στην ίδια επίσκεψη) πολλαπλά δείγματα , για σχεδόν όλους τους μικροβιακούς παράγοντες που προκαλούν ουρηθρίτιδα . Στο ιατρείο , μπορεί επίσης να ληφθεί εκτός της συμβατικής καλλιέργειας και ανίχνευση DNA των λοιμωδών αυτών παραγόντων με μικρό επιπρόσθετο κόστος .
Μετάδοση Μυκοπλάσματος
Η μετάδοση οφείλεται κυρίως σε άμεση επαφή με τους βλεννογόνους των γεννητικών οργάνων . Το Mycoplasma genitalium έχει ανιχνευθεί σε δείγματα από τον πρωκτό με καλλιέργεια , και με NAATs, [21,22] και η μετάδοση από τη σεξουαλική επαφή του πέους-πρωκτού θεωρείται καθιερωμένη οδός [23] . Η επαφή με τα στοματικά γεννητικά όργανα είναι λιγότερο πιθανό να συμβάλει σε σημαντικό βαθμό , καθώς η μεταφορά του Mycoplasma genitalium από το γεννητικό όργανο στον οροφάρυγγα είναι χαμηλή [24,25] . Η μετάδοση από τη μητέρα στο παιδί κατά τη γέννηση δεν έχει μελετηθεί συστηματικά , αλλά υπάρχουν αναφορές ότι το Mycoplasma genitalium ανιχνεύθηκε στην αναπνευστική οδό νεογέννητων παιδιών [26] . Ο κίνδυνος μετάδοσης μυκοπλάσματος ανά σεξουαλική συνάντηση δεν έχει καθοριστεί , αλλά επειδή το Mycoplasma genitalium είναι παρών σε χαμηλότερη συγκέντρωση σε δείγματα γεννητικών οδών από ότι το Chlamydia trachomatis , θα μπορούσε να ειπωθεί ότι ο κίνδυνος μετάδοσης μυκοπλάσματος είναι ελαφρώς μικρότερος από τον κίνδυνο μετάδοσης χλαμυδίων [27] .
Κλινικά συμπτώματα και σημεία λοίμωξης από μυκόπλασμα
Συμπτώματα και σημεία στις γυναίκες
Επιπλοκές Σε Γυναίκες
Συμπτώματα και σημεία στους άνδρες
Επιπλοκές Στους Άνδρες
Δοκιμές ενίσχυσης νουκλεϊκού οξέος DNA για μυκόπλασμα (NAATs)
Οι δοκιμές ενίσχυσης νουκλεϊκού οξέος (NAATs) που αναγνωρίζουν το νουκλεϊκό οξύ ειδικού για το μυκόπλασμα (DNA ή RNA) στο τα κλινικά δείγματα είναι οι μόνες χρήσιμες μέθοδοι διάγνωσης [III; ΣΙ] . Ωστόσο, δεν διατίθενται στο εμπόριο δοκιμασίες NAAT οι οποίες να έχουν αξιολογηθεί σύμφωνα με το πρότυπο έγκρισης της FDA των ΗΠΑ , και οι δοκιμές στην αγορά, οι οποίες έχουν πιστοποιηθεί με σήμανση CE για τη συμμόρφωση εγγράφων σύμφωνα με τη νομοθεσία της ΕΕ , πάσχουν από περιορισμένη επικύρωση . Κατά συνέπεια, είναι εξαιρετικά σημαντικό τα διαγνωστικά εργαστήρια να επικυρώνουν προσεκτικά οποιαδήποτε εμπορική ή εσωτερικές αναλύσεις και να συμμετέχουν σε προγράμματα εξωτερικής αξιολόγησης της ποιότητας (EQA), όπως το EQUALIS σύστημα EQA . Αυτό το σύστημα EQA έχει αποδείξει σημαντικές διαφορές στην ευαισθησία των συμμετεχόντων εργαστηρίων . Με την ευρέως διαδεδομένη αντοχή μακρολίδης στην Ευρώπη, συνιστάται ιδιαίτερα να είναι όλες οι θετικές δοκιμές ακολουθούμενη από μια δοκιμασία ικανή να ανιχνεύει μεταλλάξεις που προκαλούν αντίσταση μακρολίδης . Υπάρχει μια ποικιλία από διαθέσιμες μεθόδους για το σκοπό αυτό [29,35-39] . Ο κύριος καθοριστικός παράγοντας για την επιλογή μιας δοκιμασίας αντίστασης είναι: 1) η πρακτική εφαρμογή του στο εργαστήριο, και 2) η ευαισθησία του . Η τελευταία πτυχή ποικίλει σημαντικά μεταξύ των αναλύσεων. Ο προσδιορισμός της αντοχής στη μοξιφλοξασίνη μπορεί επίσης να διεξαχθεί χρησιμοποιώντας μοριακές μεθόδους, αν και το η συσχέτιση μεταξύ των μεταλλάξεων στο parC και της in vitro αντοχής της μοξιφλοξασίνης είναι λιγότερο ξεκάθαρη . Επί του παρόντος, η ανίχνευση των μεταλλάξεων που προκαλούν αντίσταση στη μοξιφλοξασίνη, πιθανώς δεν αναφέρεται σε τακτική βάση στην Ευρώπη, διότι το επίπεδο αντίστασης είναι χαμηλό μικρότερο του 5% αλλά μπορεί να θεωρηθεί στην περιοχή Ασίας-Ειρηνικού όπου η μοξιφλοξασίνη η αντίσταση είναι πιο συχνή [41-43] ή σε ασθενείς που έχουν αποκτήσει τη λοίμωξη στην περιοχή αυτή [40] .
Δείγματα για μυκόπλασμα
Είναι δύσκολο να γίνουν ακριβείς συστάσεις σχετικά με τον βέλτιστο τύπο δείγματος . Τα πρώτα ούρα από τους άνδρες και τις γυναίκες παρέχουν ένα καλό διαγνωστικό δείγμα που μπορεί να ληφθουν από τους ίδιους τους ασθενείς [28] . Δεν υπάρχουν δεδομένα όσον αφορά τη σημασία της κράτησης ούρων για ορισμένο χρονικό διάστημα , οπότε εφαρμόζονται οι διαδικασίες που ισχύουν στην δειγματοληψία για Chlamydia trachomatis . Η λήψη με Κολπικό στυλεό παρέχει επίσης ικανοποιητική ευαισθησία [44-46] . Δεν υπάρχουν διαθέσιμα δεδομένα σχετικά με το πόσο χρόνο μετά την πρώτη έκθεση θα πρέπει να γίνεη η δοκιμή , αλλά σε αναλογία με το Chlamydia trachomatis , μια περίοδος διάρκειας δύο εβδομάδων θεωρείται ο ελάχιστος χρόνος επώασης . Η συσχέτιση μεταξύ μιας πρωκτικής λοίμωξης και των συμπτωμάτων είναι αβέβαιη , αλλά μια υπαρκτή πρωκτική μόλυνση είναι πιθανό να μεταφερθεί αν δεν ανιχνευθεί και δεν υποβληθούν σε θεραπεία . Στις περισσότερες περιπτώσεις , θα ήταν σκόπιμο να χρησιμοποιηθεί η ίδια διαδικασία δειγματοληψίας όπως για τη δοκιμή Chlamydia trachomatis. Ωστόσο, μερικά μέσα μεταφοράς όπως το μέσο μεταφοράς Aptima® που έχει σχεδιαστεί για το NAAT test Chlamydia trachomatis θα λύσει (εξοντώσει) το Mycoplasma genitalium , και έτσι δεν θα ανιχνευθεί εύκολα ή και καθόλου . Χρειάζεται μεγάλη προσοχή στην λήψη του δείγματος και στην επιλογή μέσου μεταφοράς .
Η λήψη κολπικού , τραχηλικού , ουρηθρικού , ή σπέρματος για καλλιέργεια μυκοπλάσματος γίνεται πάντα με πλαστικό στυλεό , και τοποθετείται σε ειδικό υλικό μεταφοράς και συντήρησης , αφήνοντας το στυλεό μέσα στο σωληνάριο . Η συντήρηση των δειγμάτων μπορεί να κρατήσει εώς και 48 ώρες στους 2-8 βαθμούς κελσίου . Η καλλιέργειας γίνεται σε ειδικά θρεπτικά υλικά (Α7 άγαρ) .
Τα Mycoplasma Fermentans και Mycoplasma Spermatophilium επηρεάζουν την κινητικότητα και μορφολογία των σπερματοζωαρίων και μπορούν να απομονωθούν στο σπέρμα ανδρών με υπογονιμότητα .
Συμβουλές για ασθενείς με λοίμωξη από μυκόπλασμα
Εγκυμοσύνη και λοίμωξη από μυκόπλασμα
Οι λοιμώξεις από το Mycoplasma genitalium κατά τη διάρκεια της εγκυμοσύνης μπορεί να σχετίζονται με μέτρια αύξηση του κινδύνου για αποβολή και πρόωρο τοκετό [13] . Στις ευαίσθητες στις μακρολίδες μολύνσεις , μια πορεία πέντε ημερών με αζιθρομυκίνη είναι γενικά αποδεκτή . Η επιλογή φαρμάκων για μολύνσεις ανθεκτικές σε μακρολίδια είναι δύσκολο και ο κίνδυνος που σχετίζεται με τη θεραπεία με τα διαθέσιμα αντιβιοτικά μπορεί να υπερτερεί του κινδύνου για δυσμενές αποτέλεσμα της εγκυμοσύνης . Έτσι, η θεραπεία, ειδικά σε γυναίκες με μόλυνση με μακρολίδιο ανθεκτικού στελέχους Mycoplasma genitalium, μπορεί να θεωρηθεί ότι αναβάλλεται μέχρι μετά τον τοκετό . Η πριστιναμυκίνη θεωρείται ασφαλής κατά την εγκυμοσύνη και μπορεί να εξεταστεί σε συμπτωματικές γυναίκες μετά από διαβούλευση με τον υπεύθυνο μαιευτήρα [ ΑΛΛΑ , Η δραστική ουσία δεν κυκλοφορεί στην ελληνική αγορά ] . Αν και λίγα είναι γνωστά για τη μετάδοση κατά τη γέννηση, το το νεογνό πρέπει να παρατηρείται για σημεία λοίμωξης , κυρίως επιπεφυκίτιδα και λοίμωξη ανωτέρας αναπνευστικής οδού .
Γίνεται εμφανές ότι είναι καλύτερα να προλαβαίνουμε , παρά να χρησιμοποιούμε πολύπλοκα αντιβιοτικά κατά την διάρκεια της εγκυμοσύνης . Ο προγεννητικός έλεγχος , ή και ακόμα καλύτερα , ο τακτικός έλεγχος ακόμα και με συμβατική καλλιέργεια και ανίχνευση DNA , μπορεί να ανιχνεύσει ύπουλες λοιμώξεις οι οποίες μπορεί να επηρεάσουν αρκετά την μέλλουσα έγκυο / μητέρα . Επομένως, ο ιατρός Μαιευτήρας - Γυναικολόγος πρέπει να αρχίζει νωρίτερα την εκτίμηση , με συγκεκριμένα, εξατομικευμένα τεστ βασισμένα στο ιατρικό ιστορικό κάθε ασθενούς .
Θεραπεία λοίμωξης από μυκόπλασμα
Η θεραπεία ατόμων με ουρογεννητική λοίμωξη του Mycoplasma genitalium αποτρέπει τη σεξουαλική μετάδοση και μειώνει τον κίνδυνο επιπλοκών , συμπεριλαμβανομένης της πυελικής φλεγμονώδους νόσου και της υπογονιμότητας από απόφραξη σαλπίγγων [13] . Μόνο λίγες αντιμικροβιακές τάξεις έχουν δραστικότητα έναντι των μυκοπλασμάτων, συμπεριλαμβανομένων των τετρακυκλινών, των μακρολιδών και των φθοροκινολόνων . Η δοξυκυκλίνη έχει χαμηλή αποτελεσματικότητα [48-51] με ποσοστά μικροβιολογικής θεραπείας μεταξύ 30% και 40%, ενώ η αζιθρομυκίνη που δίδεται ως μονή δόση 1 g έχει ρυθμό θεραπείας περίπου 85% σε ευαίσθητες σε μακρολίδια μολύνσεις [48,49] . Ωστόσο, ο ταχέως αυξανόμενος επιπολασμός της αντοχής των μακρολιδών μειώνει δραστικά το συνολικό ποσοστό θεραπείας . Πιθανότατα, αυτό οφείλεται στην ευρεία χρήση της αζιθρομυκίνης ως 1g μονής δόσης χωρίς δοκιμή θεραπείας και μετέπειτα εξάπλωση ανθεκτικών στελεχών . Η αζιθρομυκίνη που χορηγείται με 500 mg την πρώτη ημέρα και ακολουθούμενη από 250 mg στις ημέρες 2-5 (σύνολο 1,5 g δόση) συνιστάται ως η πρώτη επιλογή για τη θεραπεία μολύνσεων από το Mycoplasma genitalium . Αν το Mycoplasma genitalium υπάρχει ακόμα μετά το δοσολογικό σχήμα μονής δόσης 1 g αζιθρομυκίνης δεν θα εξαλειφθεί με το εκτενέστερο χρονικά σχήμα αζιθρομυκίνης . Είναι αρκετά πιθανό να υπάρχουν μεταλλάξεις που δίνουν στο συγκεκριμένο στέλεχος αντίσταση στις μακρολίδες . Τα ποσοστά ανθεκτικότητας των μυκοπλασμάτων στις μακρολίδες ποικίλλουν σημαντικά γεωγραφικά , αλλά όπου η απλή δόση αζιθρομυκίνης 1g είναι το συνιστώμενο σχήμα για τη θεραπεία της μή γονοκοκκικής ουρηθρίτιδας , η αντίσταση συνήθως βρίσκεται στο 30-45% των δειγμάτων [29,40,43,52] . Η ουσία Josamycin χρησιμοποιείται ευρέως στη Ρωσία με 500 mg τρεις φορές την ημέρα για 10 ημέρες, αλλά και αυτή δεν θα εξαλείψει τα ανθεκτικά στα μακρολίδια στελέχη . Η μοξιφλοξασίνη είναι το πιο συχνά χρησιμοποιούμενο αντιμικροβιακό φάρμακο δεύτερης γραμμής . Είναι βακτηριοκτόνο και έχει ρυθμό θεραπείας που πλησιάζει το 100% σε λοιμώξεις με ευαίσθητα στελέχη [53-56] . Ωστόσο, έχει αναπτυχθεί αντίσταση με αποτυχίες θεραπείας έως και 30% , κυρίως σε ασθενείς από την περιοχή Ασίας-Ειρηνικού . Σημαντικό ποσοστό των στελεχών Μycoplasma genitalium είχαν ταυτόχρονες μεταλλάξεις μεσολαβούντος στην αντοχή μακρολιδίου αφήνοντας πολύ λίγες διαθέσιμες θεραπευτικές επιλογές [42,57-59] . Η πριστιναμυκίνη είναι το μόνο αντιμικροβιακό φάρμακο με τεκμηριωμένη δράση σε ασθενείς που αποτυγχάνουν τόσο της αζιθρομυκίνης όσο και της αζιθρομυκίνης μοξιφλοξασίνη . Πολλές από αυτές τις περιπτώσεις απέτυχαν επιπλέον την εξάλειψη με εκτεταμένη δοσολογία δοξυκυκλίνης (100 mg δύο φορές την ημέρα για 14 ημέρες) [59] . Στην Ευρώπη, χρησιμοποιείται μόνο στη Γαλλία, αλλά μπορεί να αποκτηθεί μετά από ειδική συνταγή και στις περισσότερες ευρωπαϊκές χώρες . Θα πρέπει να χρησιμοποιείται μόνο στη μέγιστη συνιστώμενη δόση 1g τέσσερις φορές την ημέρα για 10 ημέρες (από του στόματος) καθώς αυτοί οι ασθενείς αντιμετωπίζουν την τελευταία γνωστή ενεργή αντιμικροβιακή θεραπεία και η μείωση της δόσης μπορεί να οδηγήσει σε αποτυχία . Η αποτυχία της θεραπείας έχει αναφερθεί επίσης για την πριστιναμυκίνη, αλλά η επιρροή της συμμόρφωσης σε αυτές τις περιπτώσεις δεν είναι πλήρως μελετημένη .
Συνιστώμενη θεραπεία για μή επιπλεγμένη λοίμωξη από Mycoplasma genitalium επί απουσίας στελέχους ανθεκτικού στις μακρολίδες
Συνιστώμενη θεραπεία για μή επιπλεγμένη λοίμωξη από Mycoplasma genitalium επί στελέχους ανθεκτικού στις μακρολίδες
Συνιστώμενη θεραπεία δεύτερης γραμμής για μή επιπλεγμένη , αλλά επίμονη , λοίμωξη από Mycoplasma genitalium
Συνιστώμενη θεραπεία τρίτης γραμμής για μή επιπλεγμένη , αλλά επίμονη , λοίμωξη από Mycoplasma genitalium , μετά από αποτυχία με azithromycin και moxifloxacin
1. Taylor-Robinson D, Gilroy CB, Jensen JS. The biology of Mycoplasma genitalium. Venereology 2000;13:119-27.
2. Tully JG, Taylor-Robinson D, Cole RM, Rose DL. A newly discovered mycoplasma in the human urogenital tract.
Lancet 1981;I:1288-91.
3. Taylor-Robinson D, Jensen JS. Mycoplasma genitalium: from Chrysalis to Multicolored Butterfly. Clin Microbiol
Rev 2011;24(3):498-514.
4. Andersen B, Sokolowski I, Østergaard L, et al. Mycoplasma genitalium: prevalence and behavioural risk factors
in the general population. Sex Transm Infect 2007;83(3):237-41.
5. Oakeshott P, Aghaizu A, Hay P, et al. Is Mycoplasma genitalium in women the "New Chlamydia?" A
community-based prospective cohort study. Clin Infect Dis 2010;51(10):1160-6.
6. Manhart LE, Holmes KK, Hughes JP, Houston LS, Totten PA. Mycoplasma genitalium among young adults in the
United States: an emerging sexually transmitted infection. Am J Public Health 2007;97(6):1118-25.
7. Sonnenberg P, Ison CA, Clifton S, et al. Epidemiology of Mycoplasma genitalium in British men and women
aged 16-44 years: evidence from the third National Survey of Sexual Attitudes and Lifestyles (Natsal-3). Int J
Epidemiol 2015;44(6):1982-94.
8. Cohen CR, Manhart LE, Bukusi EA, et al. Association between Mycoplasma genitalium and acute endometritis.
Lancet 2002;359(9308):765-6.
9. Manhart LE, Critchlow CW, Holmes KK, et al. Mucopurulent cervicitis and Mycoplasma genitalium. J Infect Dis
2003;187(4):650-7.
10. Cohen CR, Mugo NR, Astete SG, et al. Detection of Mycoplasma genitalium in women with laparoscopically
diagnosed acute salpingitis. Sex Transm Infect 2005;81(6):463-6.
11. Anagrius C, Loré B, Jensen JS. Mycoplasma genitalium: prevalence, clinical significance, and transmission. Sex
Transm Infect 2005;81(6):458-62.
12. Falk L, Fredlund H, Jensen JS. Signs and symptoms of urethritis and cervicitis among women with or without
Mycoplasma genitalium or Chlamydia trachomatis infection. Sex Transm Infect 2005;81(1):73-8.
13. Lis R, Rowhani-Rahbar A, Manhart LE. Mycoplasma genitalium infection and female reproductive tract disease:
A meta-analysis. Clin Infect Dis 2015 .
14. Oakeshott P, Hay P, Taylor-Robinson D, et al. Prevalence of Mycoplasma genitalium in early pregnancy and
relationship between its presence and pregnancy outcome. BJOG 2004;111(12):1464-7.
15. Peuchant O, Le RC, Desveaux C, et al. Screening for Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, and
Mycoplasma genitalium should it be integrated into routine pregnancy care in French young pregnant
women? Diagn Microbiol Infect Dis 2015;82(1):14-9.
16. Wikström A, Jensen JS. Mycoplasma genitalium: a common cause of persistent urethritis among men treated
with doxycycline. Sex Transm Infect 2006;82(4):276-9.
17. Jensen JS, Bradshaw C. Management of Mycoplasma genitalium infections - can we hit a moving target? BMC
Infect Dis 2015;15(1):343.12
18. Vandepitte J, Weiss HA, Bukenya J, et al. Association between Mycoplasma genitalium infection and HIV
acquisition among female sex workers in Uganda: evidence from a nested case-control study. Sex Transm
Infect 2014.
19. Mavedzenge SN, Van der Pol B, Weiss HA, et al. The association between Mycoplasma genitalium and HIV-1
acquisition among women in Zimbabwe and Uganda. AIDS 2012.
20. Manhart LE. Another STI associated with HIV-1 acquisition: now what? AIDS 2012;26(5):635-7.
21. Soni S, Alexander S, Verlander N, et al. The prevalence of urethral and rectal Mycoplasma genitalium and its
associations in men who have sex with men attending a genitourinary medicine clinic. Sex Transm Infect
2010;86(1):21-4.
22. Lillis RA, Nsuami MJ, Myers L, Martin DH. Utility of urine, vaginal, cervical, and rectal specimens for detection
of Mycoplasma genitalium in women. J Clin Microbiol 2011;49(5):1990-2.
23. Edlund M, Blaxhult A, Bratt G. The spread of Mycoplasma genitalium among men who have sex with men. Int J
STD AIDS 2012;23(6):455-6.
24. Bradshaw CS, Fairley CK, Lister NA, et al. Mycoplasma genitalium in men who have sex with men at male-only
saunas. Sex Transm Infect 2009.
25. Deguchi T, Yasuda M, Yokoi S, et al. Failure to detect Mycoplasma genitalium in the pharynges of female sex
workers in Japan. J Infect Chemother 2009;15(6):410-3.
26. Luki N, Lebel P, Boucher M, et al. Comparison of polymerase chain reaction assay with culture for detection of
genital mycoplasmas in perinatal infections. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1998;17(4):255-63.
27. Walker J, Fairley CK, Bradshaw CS, et al. The difference in determinants of Chlamydia trachomatis and
Mycoplasma genitalium in a sample of young Australian women. BMC Infect Dis 2011;11:35.
28. Jensen JS, Björnelius E, Dohn B, Lidbrink P. Comparison of first void urine and urogenital swab specimens for
detection of Mycoplasma genitalium and Chlamydia trachomatis by polymerase chain reaction in patients
attending a sexually transmitted disease clinic. Sex Transm Dis 2004;31(8):499-507.
29. Salado-Rasmussen K, Jensen JS. Mycoplasma genitalium testing pattern and macrolide resistance: A Danish
nationwide retrospective survey. Clin Infect Dis 2014;59(1):24-30.
30. Bjartling C, Osser S, Persson K. Mycoplasma genitalium in cervicitis and pelvic inflammatory disease among
women at a gynecologic outpatient service. Am J Obstet Gynecol 2012;206(6):476-8.
31. Taylor-Robinson D, Gilroy CB, Horowitz S, Horowitz J. Mycoplasma genitalium in the joints of two patients with
arthritis. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1994;13(12):1066-9.
32. Falk L, Fredlund H, Jensen JS. Symptomatic urethritis is more prevalent in men infected with Mycoplasma
genitalium than with Chlamydia trachomatis. Sex Transm Infect 2004;80(4):289-93.
33. Horner PJ, Taylor-Robinson D. Association of Mycoplasma genitalium with balanoposthitis in men with nongonococcal
urethritis. Sex Transm Infect 2010.
34. Björnelius E, Jensen JS, Lidbrink P. Conjunctivitis Associated with Mycoplasma genitalium Infection. Clin Infect
Dis 2004;39(7):e67-e69.
35. Jensen JS, Bradshaw CS, Tabrizi SN, Fairley CK, Hamasuna R. Azithromycin treatment failure in Mycoplasma
genitalium-positive patients with nongonococcal urethritis is associated with induced macrolide resistance.
Clin Infect Dis 2008;47(12):1546-53.
13
36. Twin J, Jensen JS, Bradshaw CS, et al. Transmission and selection of macrolide resistant Mycoplasma
genitalium infections detected by rapid high resolution melt analysis. PLoS ONE 2012;7(4):e35593.
37. Jensen JS. Protocol for the detection of Mycoplasma genitalium by PCR from clinical specimens and
subsequent detection of macrolide resistance-mediating mutations in region V of the 23S rRNA gene. In:
MacKenzie CR, Henrich B, editors. Diagnosis of Sexually Transmitted Diseases; Methods and Protocols. 903 ed.
New York: Humana Press, Springer; 2012. p. 129-39.
38. Touati A, Peuchant O, Jensen JS, Bebear C, Pereyre S. Direct detection of macrolide resistance in Mycoplasma
genitalium isolates from clinical specimens from France by use of real-time PCR and melting curve analysis. J
Clin Microbiol 2014;52(5):1549-55.
39. Wold C, Sorthe J, Hartgill U, et al. Identification of macrolide-resistant Mycoplasma genitalium using real-time
PCR. J Eur Acad Dermatol Venereol 2015.
40. Pond MJ, Nori AV, Witney AA, et al. High prevalence of antibiotic-resistant Mycoplasma genitalium in
nongonococcal urethritis: the need for routine testing and the inadequacy of current treatment options. Clin
Infect Dis 2014;58(5):631-7.
41. Shimada Y, Deguchi T, Nakane K, et al. Emergence of clinical strains of Mycoplasma genitalium harbouring
alterations in ParC associated with fluoroquinolone resistance. Int J Antimicrob Agents 2010;36(3):255-8.
42. Couldwell DL, Tagg KA, Jeoffreys NJ, Gilbert GL. Failure of moxifloxacin treatment in Mycoplasma genitalium
infections due to macrolide and fluoroquinolone resistance. Int J STD AIDS 2013;24(10):822-8.
43. Kikuchi M, Ito S, Yasuda M, et al. Remarkable increase in fluoroquinolone-resistant Mycoplasma genitalium in
Japan. J Antimicrob Chemother 2014.
44. Hardick J, Giles J, Hardick A, et al. Performance of the Gen-Probe transcription-mediated amplification
research assay compared to that of a multitarget real-time PCR for Mycoplasma genitalium detection. J Clin
Microbiol 2006;44(4):1236-40.
45. Wroblewski JK, Manhart LE, Dickey KA, Hudspeth MK, Totten PA. Comparison of transcription-mediated
amplification and PCR assay results for various genital specimen types for detection of Mycoplasma
genitalium. J Clin Microbiol 2006;44(9):3306-12.
46. Carlsen KH, Jensen JS. Mycoplasma genitalium PCR: does freezing of specimens affect sensitivity? J Clin
Microbiol 2010;48(10):3624-7.
47. Reinton N, Moi H, Olsen AO, et al. Anatomic distribution of Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis and
Mycoplasma genitalium infections in men who have sex with men. Sex Health 2013;10(3):199-203.
48. Björnelius E, Anagrius C, Bojs G, et al. Antibiotic treatment of symptomatic Mycoplasma genitalium infection in
Scandinavia: a controlled clinical trial. Sex Transm Infect 2008;84(1):72-6.
49. Mena LA, Mroczkowski TF, Nsuami M, Martin DH. A randomized comparison of azithromycin and doxycycline
for the treatment of Mycoplasma genitalium-positive urethritis in men. Clin Infect Dis 2009;48(12):1649-54.
50. Schwebke JR, Rompalo A, Taylor S, et al. Re-evaluating the treatment of nongonococcal urethritis: Emphasizing
emerging pathogens − Α Randomized Clinical Trial. Clin Infect Dis 2011;52(2):163-70.
51. Manhart LE, Gillespie CW, Lowens MS, et al. Standard treatment regimens for nongonococcal urethritis have
similar but declining cure rates: a randomized controlled trial. Clin Infect Dis 2013;56(7):934-42.
52. Nijhuis RH, Severs TT, Van der Vegt DS, Van Zwet AA, Kusters JG. High levels of macrolide resistance-associated
mutations in Mycoplasma genitalium warrant antibiotic susceptibility-guided treatment. J Antimicrob
Chemother 2015.
14
53. Bradshaw CS, Jensen JS, Tabrizi SN, et al. Azithromycin failure in Mycoplasma genitalium urethritis. Emerg
Infect Dis 2006;12(7):1149-52.
54. Jernberg E, Moghaddam A, Moi H. Azithromycin and moxifloxacin for microbiological cure of Mycoplasma
genitalium infection: an open study. Int J STD AIDS 2008;19(10):676-9.
55. Bradshaw CS, Chen MY, Fairley CK. Persistence of Mycoplasma genitalium following azithromycin therapy.
PLoS ONE 2008;3(11):e3618.
56. Anagrius C, Lore B, Jensen JS. Treatment of Mycoplasma genitalium. Observations from a Swedish STD Clinic.
PLoS ONE 2013;8(4):e61481.
57. Terada M, Izumi K, Ohki E, Yamagishi Y, Mikamo H. Antimicrobial efficacies of several antibiotics against
uterine cervicitis caused by Mycoplasma genitalium. J Infect Chemother 2012;18(3):313-7.
58. Gundevia Z, Foster R, Jamil MS, McNulty A. Positivity at test of cure following first-line treatment for genital
Mycoplasma genitalium: follow-up of a clinical cohort. Sex Transm Infect 2015;91(1):11-3.
59. Bissessor M, Tabrizi SN, Twin J, et al. Macrolide resistance and azithromycin failure in a Mycoplasma
genitalium-infected cohort and response of azithromycin failures to alternative antibiotic regimens. Clin Infect
Dis 2015;60(8):1228-36.
60. Judlin P, Liao Q, Liu Z, et al. Efficacy and safety of moxifloxacin in uncomplicated pelvic inflammatory disease:
the MONALISA study. BJOG 2010;117(12):1475-84.
61. Workowski KA, Bolan GA. Sexually transmitted diseases treatment guidelines, 2015. MMWR Recomm Rep
2015;64(RR-03):1-137.
62. Horner P, Blee K, O'Mahony C, et al. 2015 UK National Guideline on the management of non-gonococcal
urethritis. Int J STD AIDS 2015.
63. Falk L, Enger M, Jensen JS. Time to eradication of Mycoplasma genitalium after antibiotic treatment in men
and women. J Antimicrob Chemother 2015;70(11):3134-40.
Η σελίδα έχει εώς τώρα
Επισκέπτες
Δείτε Επίσης :
Λοιμώξεις Από Γεννητικό Μυκόπλασμα